Fachkraft für Zellkultur
Grundlagenkurs
Der sichere Umgang mit Zellkulturtechniken wird im Laboralltag von biowissenschaftlichen Forschungsinstituten, medizinischen Einrichtungen und Biotechnologie-Unternehmen immer wichtiger. Fachkräfte für Zellkultur verfügen über ein fundiertes und anwendungsorientiertes Wissen über die modernen Methoden der Zell- und Gewebekultur, der Licht- und Fluoreszenzmikroskopie sowie der Durchflusszytometrie. Im Grundlagenkurs steht die Vermittlung von Basis- und Hintergrundwissen zu den aktuellen Methoden der Zellkultur im Vordergrund. Diese werden durch praktische Demonstrationen, Übungen an Geräten und Exkursionen in Labore ergänzt. Die im Grundlagenkurs erworbenen Kenntnisse können zusätzlich in wahlweise buchbaren Praxismodulen vertieft werden. Nach Bestehen einer Klausurprüfung erhalten die Absolventen ein anerkanntes TÜV-Zertifikat.
Laborpraktikum
Im Anschluss an den Grundlagenkurs können bei Bedarf (nicht prüfungsrelevant) zusätzliche Praxismodule belegt werden.
Kursinhalte Grundlagenkurs:
Einführung in die Zellbiologie:
- Pro- und Eukaryonten: Zellbestandteile und Vermehrung
- Viren, Phagen, Pflanzenzellen
- Zell- und Gewebetypen, Zelldifferenzierung
Voraussetzungen für eine erfolgreiche Zellkultur:
- Definition und Begriffe
- Geräte, Materialien, Medien und Puffersysteme in der Zellkultur
- Sicherheitsregeln und Gefahrenquellen
- Sterile Arbeitstechnik und Kontaminationsanalyse
Routinemethoden in der Zellkultur I:
- Zelllinien und ihre Charakteristika
- Adhärente und Suspensions-Zellen
- Konfluenzbeurteilung und Subkultivierung
- Zellzählung manuell und automatisch, Zellwachstumsberechnung
- Beschichtung von Zellkulturmaterial
- Troubleshooting
Primärzellkultur:
- Allgemeine Prinzipien der primären Zellkultur
- Spezielle Prinzipien der primären Zellkultur
- Embryonale und adulte Stammzellen
Mikroskopietechniken:
- Optische Elemente und grundlegende Einstellungen des Mikroskops
- Eigenschaften und Qualitätskontrolle der Objektive
- Zerlegen und Zusammenbau eines Mikroskops
- Fluoreszenz-Mikroskopie: Anwendungen, Filter, Spektren, Marker, Farbstoffe
- Arbeit mit Grün-fluoreszierenden Proteinen
- Konfokale Scanning Mikroskopie: Imaging-Methoden, 3D-Rekonstruktion
Durchflusszytometrie:
- Technische Grundlagen
- Zellpräparation und Fluoreszenzfarbstoffe
- Nachweis von intrazellulären und Oberflächen-Proteinen, multiparametrische Zellcharakterisierung
- Übungen zur FACS-Datenauswertung
Spezielle Methoden der Zellkultur:
- Proliferation, Vitalität und Zytotoxizität: Definitonen
- Apoptose: Bedeutung, Charakteristika, Signalwege
- Nachweismethoden und ihre Grenzen
Methoden des Gentransfers in Zellen:
- Zellen als Wirts-Vektor-Systeme
- Klonierung in der Zellkultur
- Transfektionsmethoden in der Zellkultur
Kursinhalte Laborpraktikum:
P1:
Anlage von Primärzellkulturen: Die Herstellung einer primären Gliazellkultur aus Rattenhirn beinhaltet die Entnahme des Gehirns, die Präparation unter mikroskopischer Kontrolle, den Gewebeaufschluss und Kultivierung der präparierten Zellen. Es werden außerdem verschiedene primäre Zellkulturen in ihren Entwicklungsstadien mikroskopiert.
P2:
Methoden der Durchflusszytometrie
Durchflusszytometrische Quantifizierung von Proteinexpression mit fluoreszenzmarkierten Antikörpern. Detektion und Charakterisierung von Zellsubpopulationen in peripherem Blut mittels multiparametrischer Durchflusszytometrie.
P3:
Nachweis der Zytotoxizität, Proliferation und Apoptose: Es werden verschiedene Assays zur Beurteilung von Zellen vorgestellt, um Aussagekraft, Zeit- und Gerätebedarf kritisch bewerten zu können.
Dauer:
Der Grundlagenkurs umfasst 100 Unterrichtsstunden und wird als Blockkurs mit 2 Wochen jeweils von montags bis freitags von 9 - 18 Uhr durchgeführt. Der Anteil praktischen Übungen, Gerätedemonstrationen und Laborexkursionen beträgt ca. 35 %. Das Laborpraktikum beinhaltet drei wahlweise buchbare Praxiseinheiten von ein bis zwei Tagen im Anschluss an den Grundlagenkurs.
Termine:
Kurse |
Programm |
Anmeldung |
|---|---|---|
| Grundlagenkurs | ||
| Laborpraktikum |
Gruppenstärke:
Max. 20 Teilnehmer im Grundlagenkurs max. 8 P. im Praktikum
Zielgruppe:
Technische Angestellte und Laboranten/innen mit abgeschlossener Berufsausbildung sowie Mitarbeiter/innen aus biologisch-biowissenschaftlichen Einrichtungen mit Laborerfahrungen und Vorkenntnissen in Molekularbiologie.
Voraussetzungen:
Berufsabschluss als Laborant/in oder Labor-Erfahrung
Kursgebühr:
Grundlagenkurs:
1.295,00 € je Teilnehmer/in zzgl. MwSt. Prüfungsgebühr: 300,00 € je Teilnehmer/in zzgl. MwSt.
Laborpraktikum:
345,- EUR je Teilnehmer/in zzgl. MwSt. für P1
495,- EUR je Teilnehmer/in zzgl. MwSt. für P2 bzw. P3
Referenten | |
| Dr. Dorette Freyer Charité Universitätsmedizin Berlin |
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| Dr. Joanna Listopad Max-Delbrück-Centrum für Molekulare Medizin (MDC) |
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| Dipl.-Biotech. Rita Mitlöhner Charité Universitätsmedizin Berlin |
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